Detail
Článek
Článek online
FT
Medvik - BMČ
  • Je něco špatně v tomto záznamu ?

Exprese a purifikace proteinů
[Protein expression and purification]

Růčková E., Müller P., Vojtěšek B.

. 2014 ; 27 (Supplementum 1) : S92-S97.

Jazyk čeština Země Česko

Typ dokumentu práce podpořená grantem

Perzistentní odkaz   https://www.medvik.cz/link/bmc14062244

Metody exprese a purifikace rekombinantních proteinů umožňují produkci a detailní charakterizaci proteinů v základním výzkumu během in vitro experimentů, ale také přípravu proteinů s terapeutickým využitím. Publikace shrnuje základní postupy od přípravy expresních vektorů až po techniku afinitní purifikace. Dále pojednává o vlastnostech různých prokaryotických a eukaryotických expresních systémů a možnostech jejich využití. Molekulární klonování, které slouží k přípravě expresních vektorů pro rekombinantní proteiny, umožňuje cíleně modifikovat vlastnosti těchto proteinů tak, aby byla usnadněna jejich purifikace a také pozměněna jejich stabilita, aktivita nebo funkce. V současné době je k dispozici široká škála metodických přístupů, jež umožňují rychlou a efektivní přípravu expresních vektorů. Zvolený produkční organizmus a způsob purifikace rekombinantního proteinu určují výběr expresního vektoru. První volbou často bývá expresní systém využívající bakterii Escherichia coli, jehož přednostmi jsou zejména technická, časová i finanční nenáročnost. Tento expresní systém není příliš vhodný pro produkci komplexních savčích proteinů, pro které jsou optimální expresní systémy založené na využití eukaryotických organizmů (kvasinky, hmyzí buňky nebo savčí buňky). Kultivace hmyzích a savčích buněk je však technicky i finančně náročná. Rekombinantní proteiny jsou purifikovány nejčastěji metodou afinitní chromatografie využívající specifickou interakci peptidu nebo proteinu s afinitní matricí. Tyto peptidy či proteiny jsou fúzovány s N‑ nebo C‑koncem purifikovaného proteinu. Purifikace probíhá ve třech krocích, kdy je rekombinantní protein prostřednictvím afinitních značek specificky zachycen na matrici chromatografické kolony, dále následuje promývací krok, po kterém je uvolněn z kolony čistý protein.

Production of recombinant proteins is essential for many applications in both basic research and also in medicine, where recombinant proteins are used as pharmaceuticals. This review sum­marizes procedures involved in recombinant protein expression and purification, including molecular cloning of target genes into expression vectors, selection of the appropriate expres­sion system, and protein purification techniques. Recombinant DNA technology allows protein engineering to modify protein stability, activity and function or to facilitate protein purification by affinity tag fusions. A wide range of cloning systems enabling fast and effective design of expression vectors is currently available. A first choice of protein expression system is usually the bacteria Escherichia coli. The main advantages of this prokaryotic expression system are low cost and simplicity; on the other hand this system is often unsuitable for production of complex mam­malian proteins. Protein expression mediated by eukaryotic cells (yeast, insect and mammalian cells) usually produces properly folded and posttranslationally modified proteins. How­ever, cultivation of insect and, especially, mammalian cells is time consuming and expensive. Affinity tagged recombinant proteins are purified efficiently using affinity chromatography. An affinity tag is a protein or peptide that mediates specific binding to a chromatography column, unbound proteins are removed during a washing step and pure protein is subsequently eluted. Key words: recombinant protein – molecular cloning – purification – expression system This work was supported by the European Regional Development Fund and the State Budget of the Czech Republic (RECAMO, CZ.1.05/2.1.00/03.0101) and by MH CZ – DRO (MMCI, 00209805). The authors declare they have no potential conflicts of interest concerning drugs, products, or services used in the study. The Editorial Board declares that the manuscript met the ICMJE “uniform requirements” for bio­medical papers. Submitted: 22. 1. 2014 Accepted: 20. 3. 2014

Protein expression and purification

000      
00000naa a2200000 a 4500
001      
bmc14062244
003      
CZ-PrNML
005      
20160426111958.0
007      
ta
008      
140623s2014 xr d f 000 0|cze||
009      
AR
040    __
$a ABA008 $b cze $d ABA008 $e AACR2
041    0_
$a cze $b eng
044    __
$a xr
100    1_
$a Růčková, Eva $7 _AN049666 $u Regionální centrum aplikované molekulární onkologie, Masarykův onkologický ústav, Brno
245    10
$a Exprese a purifikace proteinů / $c Růčková E., Müller P., Vojtěšek B.
246    31
$a Protein expression and purification
520    3_
$a Metody exprese a purifikace rekombinantních proteinů umožňují produkci a detailní charakterizaci proteinů v základním výzkumu během in vitro experimentů, ale také přípravu proteinů s terapeutickým využitím. Publikace shrnuje základní postupy od přípravy expresních vektorů až po techniku afinitní purifikace. Dále pojednává o vlastnostech různých prokaryotických a eukaryotických expresních systémů a možnostech jejich využití. Molekulární klonování, které slouží k přípravě expresních vektorů pro rekombinantní proteiny, umožňuje cíleně modifikovat vlastnosti těchto proteinů tak, aby byla usnadněna jejich purifikace a také pozměněna jejich stabilita, aktivita nebo funkce. V současné době je k dispozici široká škála metodických přístupů, jež umožňují rychlou a efektivní přípravu expresních vektorů. Zvolený produkční organizmus a způsob purifikace rekombinantního proteinu určují výběr expresního vektoru. První volbou často bývá expresní systém využívající bakterii Escherichia coli, jehož přednostmi jsou zejména technická, časová i finanční nenáročnost. Tento expresní systém není příliš vhodný pro produkci komplexních savčích proteinů, pro které jsou optimální expresní systémy založené na využití eukaryotických organizmů (kvasinky, hmyzí buňky nebo savčí buňky). Kultivace hmyzích a savčích buněk je však technicky i finančně náročná. Rekombinantní proteiny jsou purifikovány nejčastěji metodou afinitní chromatografie využívající specifickou interakci peptidu nebo proteinu s afinitní matricí. Tyto peptidy či proteiny jsou fúzovány s N‑ nebo C‑koncem purifikovaného proteinu. Purifikace probíhá ve třech krocích, kdy je rekombinantní protein prostřednictvím afinitních značek specificky zachycen na matrici chromatografické kolony, dále následuje promývací krok, po kterém je uvolněn z kolony čistý protein.
520    9_
$a Production of recombinant proteins is essential for many applications in both basic research and also in medicine, where recombinant proteins are used as pharmaceuticals. This review sum­marizes procedures involved in recombinant protein expression and purification, including molecular cloning of target genes into expression vectors, selection of the appropriate expres­sion system, and protein purification techniques. Recombinant DNA technology allows protein engineering to modify protein stability, activity and function or to facilitate protein purification by affinity tag fusions. A wide range of cloning systems enabling fast and effective design of expression vectors is currently available. A first choice of protein expression system is usually the bacteria Escherichia coli. The main advantages of this prokaryotic expression system are low cost and simplicity; on the other hand this system is often unsuitable for production of complex mam­malian proteins. Protein expression mediated by eukaryotic cells (yeast, insect and mammalian cells) usually produces properly folded and posttranslationally modified proteins. How­ever, cultivation of insect and, especially, mammalian cells is time consuming and expensive. Affinity tagged recombinant proteins are purified efficiently using affinity chromatography. An affinity tag is a protein or peptide that mediates specific binding to a chromatography column, unbound proteins are removed during a washing step and pure protein is subsequently eluted. Key words: recombinant protein – molecular cloning – purification – expression system This work was supported by the European Regional Development Fund and the State Budget of the Czech Republic (RECAMO, CZ.1.05/2.1.00/03.0101) and by MH CZ – DRO (MMCI, 00209805). The authors declare they have no potential conflicts of interest concerning drugs, products, or services used in the study. The Editorial Board declares that the manuscript met the ICMJE “uniform requirements” for bio­medical papers. Submitted: 22. 1. 2014 Accepted: 20. 3. 2014
650    12
$a rekombinantní proteiny $x genetika $x chemická syntéza $7 D011994
650    12
$a klonování DNA $7 D003001
650    _2
$a prokaryotické buňky $7 D011387
650    _2
$a eukaryotické buňky $7 D005057
650    _2
$a chromatografie afinitní $7 D002846
650    _2
$a kultivační média $7 D003470
650    _2
$a Escherichia coli $x genetika $7 D004926
650    _2
$a virové proteiny $x genetika $7 D014764
650    _2
$a kvasinky $x genetika $7 D015003
650    12
$a genetické vektory $7 D005822
650    12
$a exprese genu $7 D015870
650    _2
$a genetická transkripce $7 D014158
650    _2
$a proteinové inženýrství $7 D015202
653    00
$a purifikace
653    00
$a expresní systém
653    00
$a expresní vektor
655    _2
$a práce podpořená grantem $7 D013485
700    1_
$a Müller, Petr $7 xx0036920 $u Regionální centrum aplikované molekulární onkologie, Masarykův onkologický ústav, Brno
700    1_
$a Vojtěšek, Bořivoj, $d 1960- $7 xx0001694 $u Regionální centrum aplikované molekulární onkologie, Masarykův onkologický ústav, Brno
773    0_
$w MED00011030 $t Klinická onkologie $x 0862-495X $g Roč. 27, Supplementum 1 (2014), s. S92-S97
773    0_
$t Postupy a metody v aplikované molekulární onkologii $g (2014), s. S92-S97 $w MED00188581
856    41
$u https://www.prolekare.cz/casopisy/klinicka-onkologie/2014-supplementum/exprese-a-purifikace-proteinu-48881 $y plný text volně dostupný
910    __
$a ABA008 $b B 1665 $c 656 $y 4 $z 0
990    __
$a 20140623 $b ABA008
991    __
$a 20160426112051 $b ABA008
999    __
$a ok $b bmc $g 1030052 $s 860907
BAS    __
$a 3
BAS    __
$a PreBMC
BMC    __
$a 2014 $b 27 $c Supplementum 1 $d S92-S97 $i 0862-495X $m Klinická onkologie $x MED00011030 $y 95382
BMC    __
$a 2014 $d S92-S97 $m Postupy a metody v aplikované molekulární onkologii $x MED00188581
LZP    __
$c NLK188 $d 20140711 $b NLK118 $a Meditorial-20140623

Najít záznam

Citační ukazatele

Nahrávání dat ...

Možnosti archivace

Nahrávání dat ...