Triple-Color Live Imaging of Mouse Oocytes
Jazyk angličtina Země Spojené státy americké Médium print
Typ dokumentu časopisecké články, práce podpořená grantem
- Klíčová slova
- Chromosome, Live imaging, Meiosis, Oocyte, Spindle,
- MeSH
- aparát dělícího vřeténka metabolismus MeSH
- červený fluorescenční protein MeSH
- fluorescenční mikroskopie metody MeSH
- kultivované buňky MeSH
- luminescentní proteiny metabolismus MeSH
- meióza * MeSH
- mikrotubuly metabolismus MeSH
- myši MeSH
- oocyty cytologie fyziologie MeSH
- počítačové zpracování obrazu MeSH
- segregace chromozomů MeSH
- tubulin metabolismus MeSH
- zelené fluorescenční proteiny metabolismus MeSH
- zvířata MeSH
- Check Tag
- myši MeSH
- ženské pohlaví MeSH
- zvířata MeSH
- Publikační typ
- časopisecké články MeSH
- práce podpořená grantem MeSH
- Názvy látek
- luminescentní proteiny MeSH
- tubulin MeSH
- zelené fluorescenční proteiny MeSH
Meiotic division is a dynamic process that exhibits active interactive behaviors amongst different intracellular structures and components for spindle assembly and chromosome segregation. Understanding the mechanisms of meiotic spindle assembly and chromosome segregation therefore requires a quantitative analysis of spatiotemporal relationships among different structures and components. In this chapter, we describe a method for triple-color live imaging of meiotic division in mouse oocytes. This approach combines the microinjection of RNAs encoding proteins tagged with green and red fluorescent proteins and the visualization of microtubules with the fluorogenic far-red probe SiR-Tubulin. This method enables the simultaneous spatiotemporal mapping of three different components of the spindle and chromosomes, which opens the way to quantitative analysis of their interactive behaviors.
Institute of Animal Physiology and Genetics AS CR Libechov Czech Republic
Laboratory for Chromosome Segregation RIKEN Center for Biosystems Dynamics Research Kobe Japan
Citace poskytuje Crossref.org
RanGTP and importin β regulate meiosis I spindle assembly and function in mouse oocytes
