Detail
Článek
FT
Medvik - BMČ
  • Je něco špatně v tomto záznamu ?

Detekce EGFR mutací v cirkulující nádorové DNA (ctDNA) v plazmě – mezilaboratorní porovnání referenčních laboratoří v České republice
[Detection of EGFR mutations in circulating tumor DNA (ctDNA) retrieved from plasma – Interlaboratory quality assessment in the Czech Republic]

Čapková Linda, Kalinová Markéta, Tichá Ivana, Parobková Eva, Matějčková Milada, Vošmiková Hana, Horký Ondřej, Bartáková Karolína, Drábek Jiří, Bajerová Monika, Dundr Pavel

. 2018 ; 31 (5) : 353-360.

Jazyk čeština Země Česko

Perzistentní odkaz   https://www.medvik.cz/link/bmc18035072

Úvod: Mutační analýza genu pro receptor epidermálního růstového faktoru (epidermal growth factor receptor - EGFR) z nádorové tkáně je v současnosti standardním testem u pacientů s nemalobuněčným karcinomem plic. Molekulární testování cirkulující nádorové DNA (circulating tumor DNA - ctDNA) z plazmy se ukazuje být spolehlivou alternativou detekce mutací v případech, kdy není možné získat bioptický či cytologický vzorek z nádoru či je třeba monitorovat léčebnou odpověď pomocí opakovaných vyšetření. Navíc dle recentních prací ctDNA lépe odráží heterogenitu nádorového procesu než odběr z izolované nádorové léze či metastázy. Za účelem zhodnocení analytické kvality testování mutací v genu EGFR z ctDNA izolované z plazmy bylo zorganizováno mezilaboratorní porovnání v rámci referenčních laboratoří prediktivní diagnostiky v České republice. Materiál a metody: Celkem 7 laboratořím bylo zasláno 13 komerčně dostupných referenčních vzorků 2 ml plazmy obsahující nejčastější senzitivní mutace genu EGFR (delece v exonu 19, L858R) a rezistentní mutaci T790M s frekvencí mutací 5; 0,5 a 0,05 %. Jeden vyšetřovaný vzorek obsahoval nemutovanou DNA. Vzorky byly analyzovány metodami standardně využívanými v diagnostické praxi. V 6 ze 7 laboratoří byl použit cobas® EGFR Mutation Test v2, v 1 laboratoři Super-ARMS® EGFR Mutation Detection Kit. Výsledky: Určeno bylo 91 genotypů s celkovou chybovostí 24,2 % (22/91). Na 0,5% a vyšší úrovni mutační frekvence činila celková chybovost 3,2 % (2/63), na 5% úrovni 0 % (0/35). Nebyly detekovány žádné falešně pozitivní výsledky. Platforma cobas® dosáhla konzistentně úspěšné detekce na hladině 0,05 % pro deleci v exonu 19. Pro mutace L858R a T790M byl práh detekce nad hodnotou 0,5 %. Závěr: Naše výsledky poukazují na limitovanou citlivost vyšetření mutací EGFR z plazmy, a to zejména mutace T790M. Obzvláště pro vyšetřování ctDNA z plazmy, jejíž frakce může být velice nízká (až 0,01 %), je nutné klást důraz na používání vysoce senzitivních molekulárních metod. Výsledky tohoto porovnání kvality potvrzují nutnost pokusu o rebiopsii u pacientů s negativním výsledkem, neboť oproti vyšetření solidního vzorku tkáně stoupá podíl falešně negativních případů.

Background: Detection of EGFR mutations in tumor tissue represents a standard testing procedure in patients with non-small cell lung cancer. Molecular testing of circulating tumor DNA (ctDNA) in plasma enables detection of mutations in cases where tumor specimens are unavailable or when monitoring of therapeutic responses is necessary. In addition, according to the recent literature, ctDNA better reflects the heterogeneity of the neoplastic cell population than isolated tumor lesion or metastasis. We report a national interlaboratory evaluation aimed at assessing the analytical quality of ctDNA EGFR testing in plasma across seven reference laboratories in the Czech Republic. Material and methods: Aliquots of 13 plasma samples were sent to 7 laboratories and consisted of commercially available 2 ml plasma specimens of genomic DNA with mutant allelic frequencies of 5, 0.5, 0.05, and 0% of the most common sensitizing mutations (deletion in exon 19, L858R) and the resistance mutation T790M. DNA extraction and EGFR testing were performed according to standard procedures. In 6/7 laboratories the cobas® EGFR Mutation Test v2 was used. One laboratory employed the Super-ARMS® EGFR Mutation Detection Kit. Results: In total, 91 genotypes were determined with an overall error rate of 24.2% (22/91). The overall error rates were 3.2% (2/63) for the 0.5% mutation frequency and 0% for the 5% mutation frequency (0/35), respectively. No false positive results were reported. The cobas® method achieved consistent results with the 0.05% mutation frequency for the exon 19 deletion. For L858R and T790M mutations, the threshold was above the 0.5% frequency. Conclusions: The results show that EGFR testing for ctDNA in plasma has limited sensitivity, especially for detection of the T790M mutation. Particularly, in ctDNA testing of very low mutated DNA plasma fractions (below 0.01%), emphasis should be placed on the use of highly sensitive molecular methods. The outcomes of this quality assessment confirm the need for rebiopsy in patients with negative plasma results because of a higher false negative rate in comparison to tissue testing.

Detection of EGFR mutations in circulating tumor DNA (ctDNA) retrieved from plasma – Interlaboratory quality assessment in the Czech Republic

000      
00000naa a2200000 a 4500
001      
bmc18035072
003      
CZ-PrNML
005      
20181026150831.0
007      
ta
008      
181017s2018 xr d f 000 0|cze||
009      
AR
024    7_
$a 10.14735/amko2018353 $2 doi
040    __
$a ABA008 $b cze $d ABA008 $e AACR2
041    0_
$a cze $b eng
044    __
$a xr
100    1_
$a Čapková, Linda $7 xx0081988 $u Ústav patologie a molekulární medicíny, 2. LF UK a FN Motol, Praha
245    10
$a Detekce EGFR mutací v cirkulující nádorové DNA (ctDNA) v plazmě – mezilaboratorní porovnání referenčních laboratoří v České republice / $c Čapková Linda, Kalinová Markéta, Tichá Ivana, Parobková Eva, Matějčková Milada, Vošmiková Hana, Horký Ondřej, Bartáková Karolína, Drábek Jiří, Bajerová Monika, Dundr Pavel
246    31
$a Detection of EGFR mutations in circulating tumor DNA (ctDNA) retrieved from plasma – Interlaboratory quality assessment in the Czech Republic
520    3_
$a Úvod: Mutační analýza genu pro receptor epidermálního růstového faktoru (epidermal growth factor receptor - EGFR) z nádorové tkáně je v současnosti standardním testem u pacientů s nemalobuněčným karcinomem plic. Molekulární testování cirkulující nádorové DNA (circulating tumor DNA - ctDNA) z plazmy se ukazuje být spolehlivou alternativou detekce mutací v případech, kdy není možné získat bioptický či cytologický vzorek z nádoru či je třeba monitorovat léčebnou odpověď pomocí opakovaných vyšetření. Navíc dle recentních prací ctDNA lépe odráží heterogenitu nádorového procesu než odběr z izolované nádorové léze či metastázy. Za účelem zhodnocení analytické kvality testování mutací v genu EGFR z ctDNA izolované z plazmy bylo zorganizováno mezilaboratorní porovnání v rámci referenčních laboratoří prediktivní diagnostiky v České republice. Materiál a metody: Celkem 7 laboratořím bylo zasláno 13 komerčně dostupných referenčních vzorků 2 ml plazmy obsahující nejčastější senzitivní mutace genu EGFR (delece v exonu 19, L858R) a rezistentní mutaci T790M s frekvencí mutací 5; 0,5 a 0,05 %. Jeden vyšetřovaný vzorek obsahoval nemutovanou DNA. Vzorky byly analyzovány metodami standardně využívanými v diagnostické praxi. V 6 ze 7 laboratoří byl použit cobas® EGFR Mutation Test v2, v 1 laboratoři Super-ARMS® EGFR Mutation Detection Kit. Výsledky: Určeno bylo 91 genotypů s celkovou chybovostí 24,2 % (22/91). Na 0,5% a vyšší úrovni mutační frekvence činila celková chybovost 3,2 % (2/63), na 5% úrovni 0 % (0/35). Nebyly detekovány žádné falešně pozitivní výsledky. Platforma cobas® dosáhla konzistentně úspěšné detekce na hladině 0,05 % pro deleci v exonu 19. Pro mutace L858R a T790M byl práh detekce nad hodnotou 0,5 %. Závěr: Naše výsledky poukazují na limitovanou citlivost vyšetření mutací EGFR z plazmy, a to zejména mutace T790M. Obzvláště pro vyšetřování ctDNA z plazmy, jejíž frakce může být velice nízká (až 0,01 %), je nutné klást důraz na používání vysoce senzitivních molekulárních metod. Výsledky tohoto porovnání kvality potvrzují nutnost pokusu o rebiopsii u pacientů s negativním výsledkem, neboť oproti vyšetření solidního vzorku tkáně stoupá podíl falešně negativních případů.
520    9_
$a Background: Detection of EGFR mutations in tumor tissue represents a standard testing procedure in patients with non-small cell lung cancer. Molecular testing of circulating tumor DNA (ctDNA) in plasma enables detection of mutations in cases where tumor specimens are unavailable or when monitoring of therapeutic responses is necessary. In addition, according to the recent literature, ctDNA better reflects the heterogeneity of the neoplastic cell population than isolated tumor lesion or metastasis. We report a national interlaboratory evaluation aimed at assessing the analytical quality of ctDNA EGFR testing in plasma across seven reference laboratories in the Czech Republic. Material and methods: Aliquots of 13 plasma samples were sent to 7 laboratories and consisted of commercially available 2 ml plasma specimens of genomic DNA with mutant allelic frequencies of 5, 0.5, 0.05, and 0% of the most common sensitizing mutations (deletion in exon 19, L858R) and the resistance mutation T790M. DNA extraction and EGFR testing were performed according to standard procedures. In 6/7 laboratories the cobas® EGFR Mutation Test v2 was used. One laboratory employed the Super-ARMS® EGFR Mutation Detection Kit. Results: In total, 91 genotypes were determined with an overall error rate of 24.2% (22/91). The overall error rates were 3.2% (2/63) for the 0.5% mutation frequency and 0% for the 5% mutation frequency (0/35), respectively. No false positive results were reported. The cobas® method achieved consistent results with the 0.05% mutation frequency for the exon 19 deletion. For L858R and T790M mutations, the threshold was above the 0.5% frequency. Conclusions: The results show that EGFR testing for ctDNA in plasma has limited sensitivity, especially for detection of the T790M mutation. Particularly, in ctDNA testing of very low mutated DNA plasma fractions (below 0.01%), emphasis should be placed on the use of highly sensitive molecular methods. The outcomes of this quality assessment confirm the need for rebiopsy in patients with negative plasma results because of a higher false negative rate in comparison to tissue testing.
650    _2
$a lidé $7 D006801
650    12
$a nemalobuněčný karcinom plic $x diagnóza $x krev $7 D002289
650    _2
$a cirkulující nádorová DNA $x analýza $7 D000074141
650    _2
$a biopsie $x metody $7 D001706
650    12
$a erbB receptory $x analýza $7 D066246
650    _2
$a nádorové biomarkery $7 D014408
650    _2
$a testování odbornosti laboratoří $7 D059021
650    _2
$a reprodukovatelnost výsledků $7 D015203
700    1_
$a Kalinová, Markéta, $d 1973- $7 xx0076198 $u Ústav patologie a molekulární medicíny, 2. LF UK a FN Motol, Praha
700    1_
$u Ústav patologie, 1. LF UK a VFN v Praze $a Stružinská, Ivana $7 xx0137560
700    1_
$a Parobková, Eva $7 xx0228320 $u Oddělení patologie a molekulární medicíny, Thomayerova nemocnice, Praha
700    1_
$a Matějčková, Milada $u Oddělení patologie a molekulární medicíny, Thomayerova nemocnice, Praha $7 xx0150513
700    1_
$a Vošmiková, Hana $7 xx0228321 $u Fingerlandův ústav patologie, LF UK a FN Hradec Králové
700    1_
$a Horký, Ondřej $7 xx0106781 $u Oddělení onkologické patologie, Masarykův onkologický ústav, Brno
700    1_
$a Bartáková, Karolína $7 xx0228322 $u Oddělení onkologické patologie, Masarykův onkologický ústav, Brno
700    1_
$a Drábek, Jiří, $u Ústav molekulární a translační medicíny, LF UP v Olomouci $d 1969- $7 xx0067364
700    1_
$a Bajerová, Monika $7 xx0193198 $u Centrum molekulární biologie a genové terapie, Interní hematologická a onkologická klinika LF MU a FN Brno
700    1_
$a Dundr, Pavel, $d 1971- $7 xx0080436 $u Ústav patologie, 1. LF UK a VFN v Praze
773    0_
$w MED00011030 $t Klinická onkologie $x 0862-495X $g Roč. 31, č. 5 (2018), s. 353-360
856    41
$u https://www.linkos.cz/files/klinicka-onkologie/445/5412.pdf $y plný text volně přístupný
910    __
$a ABA008 $b B 1665 $c 656 $y 4 $z 0
990    __
$a 20181017 $b ABA008
991    __
$a 20181026151342 $b ABA008
999    __
$a ok $b bmc $g 1345014 $s 1032073
BAS    __
$a 3
BAS    __
$a PreBMC
BMC    __
$a 2018 $b 31 $c 5 $d 353-360 $i 0862-495X $m Klinická onkologie $x MED00011030 $y 105903
LZP    __
$c NLK109 $d 20181026 $b NLK111 $a Meditorial-20181017

Citační ukazatele

Nahrávání dat...

Možnosti archivace

Nahrávání dat...